Con una aguja de disección o asa microbiológica previamente flameada en un mechero, dejar enfriar y bajo condiciones de asepsia tome una porción pequeña de la colonia del hongo.

Colóquela en un portaobjetos sobre una gota de medio de montaje y/o colorante, dilacerar cuidadosamente el fragmento miceliar.

Colocar un cubreobjetos dejándolo caer cuidadosamente de forma inclinada sobre la muestra, para evitar la formación de burbujas de aire, si queda exceso de colorante o medio de montaje en el borde del cubreobjetos quitar el excedente con un pañuelo desechable o un cotonete, también se puede presionar ligeramente con la goma de un lápiz para eliminar las burbujas de aire. Si desea conservar por un mayor periodo de tiempo la preparación sellar el borde del cubreobjetos con varias capas de barniz de uñas transparente, dejar secar.

Observar en el microscopio compuesto de campo claro.

Fucsina ácida

Empleado para la tinción de hongos microscópicos.

Fucsina ácida 1.0 g
Agua destilada 100 ml

Mezclar el colorante con el agua destilada y conservar en un frasco gotero ámbar a temperatura ambiente.

Azul de algodón acidificado.

Es un colorante ácido también conocido como azul de anilina, que tiñe el citoplasma y la quitina presente en la pared de las células fúngicas.

Azul de algodón 0.1 g
Agua destilada 100 ml
Ácido láctico (85%) 50 ml

Mezclar vigorosamente el azul de algodón con el agua, adicionar el ácido y mezclar de nuevo, conservar en un frasco gotero ámbar a temperatura ambiente.

Azul de algodón no acidificado

Sirve para teñir la mayoría de las estructuras fúngicas.

Azul de algodón 0.05 g
Agua destilada 100 ml

Mezclar vigorosamente el azul de algodón con el agua destilada, conservar en un frasco gotero ámbar a temperatura ambiente.